Quick Cell 外泌體提取試劑盒常見問題回答

1、本試劑盒貨號：D3030L1411如何保存？

    室溫保存，無需低溫保存。

2、本試本劑盒貨號：D3030L1411能否分離純化200-1000nm直徑的囊泡嗎？

    不能，本試劑盒不能用于直徑大于200nm囊泡的分離。

3、本試劑盒貨號：D3030L1411適用于哪些種類樣品中的外泌體提取？

    除細胞上清液外，本試劑盒還可用于尿液及其他低密度體液（如腦脊液、腹水、羊水、乳汁、唾液等）的外泌體提取。

4、本試劑盒貨號：D3030L1411提取過程會用到哪些儀器和耗材？

    低溫高速離心機、渦旋振蕩器（Vortex）、水浴鍋、移液器、離心管（1.5mL、50mL）。

5、樣品在提取外泌體之前是否可以低溫保存？

     可以。長期請保存于-80℃，無須加凍存液；短期（1-2天內）則保存于4℃即可。

6、粘度過大的樣品如何處理？

    如果樣品粘度過大時（因細胞分泌物較多所致），可將樣品用1×PBS緩沖液進行等體積稀釋，混勻稀釋后的樣品再使用本試劑盒提取外泌體。

7、培養細胞時，如何去除血清來源的外泌體？

    多數情況下，細胞在體外培時養需要血清，而血清中一般都含有外泌體，為避免血清對細胞外泌體的污染，可采用以下兩種方法：

（1）  將細胞培養用的血清通過1×105g超速離心10h以去除血清外泌體；

（2）  選擇無血清培養基進行細胞培養。

8、無外泌體血清培養基（或者無血清培養基）在什么時候使用？

    細胞在正常含血清的培養基中培養一定的時間后，細胞融合度約為60%-70%時，移去原有含血清的培養基，換成新鮮的無外泌體血清培養基（或者無血清培養基），繼續培養24-48h，細胞融合度達到80%-95%左右時收取上清,該上清液即可用于提取外泌體。

9、細胞培養過程中的死細胞是否會影響外泌體的提取？

    會的。在收獲細胞時，應確定死亡細胞占比不超過5%。細胞凋亡/死亡過程中會釋放大量大小不等的囊泡，它們在外泌體的提取純化過程中會污染活細胞產生的外泌體，同時有可能會堵塞EPF純化柱。

10、準備做細胞外泌體Small RNA的NGS測序，初始樣品量需要準備多少？

    普通腫瘤細胞系推薦使用40mL以上的初始樣品量。由于某些細胞（如懸浮細胞、干細胞、神經細胞等）中外泌體含量比較低，建議先通過10kD超濾柱濃縮，準備40mL以上的濃縮液再使用本試劑盒提取外泌體。

11、加了ECS液離心之后無沉淀，這個現象正常嗎？

    由于某些細胞（如懸浮細胞、干細胞、神經細胞等）中外泌體含量比較低，加了ECS液離心之后肉眼可能無法觀察到沉淀，在重懸時使用PBS液朝離心管離心外側的內壁反復吹打洗脫即可（避免劇烈吹打）。針對提取后的外泌體先進行NTA粒徑檢測或BCA蛋白定量檢測，再決定是否進行后繼實驗。

12、在純化過程中，EPF柱為什么會出現堵塞現象？

      該現象有可能是因為細胞培養時間過長產生很多細胞碎片(樣品離心預處理時不充分，仍有細胞碎片殘留)，建議細胞培養24-48h左右收集上清液。

13、EPF柱是否可以多次使用？

    不能重復使用。過量的樣品會超出純化柱的使用極限，影響分離效果。

14、外泌體如何保存？

    純化后的外泌體可于4℃保存不超過一周，-80℃條件下可長期保存。

15、如何鑒定提取的外泌體？

    通常使用透射電鏡檢測（形態）、粒徑檢測（大小）、Western blot檢測等方法鑒定提取的外泌體。在進行Western blot檢測時，通常檢測外泌體標志蛋白（CD63、CD9、CD81、TSG101等）。

16、提取的外泌體進行Western blot前是否需要加入RIPA試劑裂解？

    需要，一般按照1:1的比例加入RIPA試劑。

17、進行外泌體Western blot鑒定時有無內參蛋白可供選擇？

      無，該檢測屬于定性檢測。                              

18、組織細胞外泌體如何提取？

    無菌環境下將組織剪成小塊（越小越好），然后在無血清的培養基中培養12h；將培養液轉移至離心管中，于4℃以3000g離心20 min去除培養液中雜質和細胞碎片，將上清液轉移至新的離心管中；先使用0.45μm濾器過濾上清液，接著使用0.2μm濾器過濾上清液，再按照本試劑盒說明書提取外泌體。